Event Schedule


Week Summary: Oct 3 – 910/09/2011

Mon-AM: 2:09, 2600′
1st Flatiron+Green Mt. Went up the First with Buzz and then continued on to Green’s summit. Then drove 8hrs to Rico, CO. Fall colors were at a spectacular peak.

Tue-AM: 1:38, 3000′
Lizard Head Peak. Slept in the Roost at the Cross Mt trailhead last night and ran by headlamp at 5am. Above 12,000′ I was in a very thick fog and could only see a few feet in front of me in my light beam. Scrambled up the final talus ridge to the vertical base of the actual Lizard Head volcanic breccia plug (~13k’). When the sky finally lightened on the way down most views were obscured by the low clouds but I got one great view of the peak (unfortunately, the Wilson Group was still largely hidden) before getting rained/graupeled on for much of the descent back to the trailhead.

Wed-AM: 1:00, 1000′
Tomboy Road out and back. Another 5am headlamp affair, so the many spectacular views in Telluride were missing.  Shin was quite sore today.

Thu- Off. Another early morning in Rico (which involved blizzard-like conditions while getting over Lizard Head Pass and then later on when collecting water samples) and the 8hr drive home combined with yesterday’s sore shin made it easy to not do any specific exercise today.

Fri-AM: 1:05, 2600′
Green Mt. up 3rd and down front. Pretty tired today but really enjoyed the sun after not having it for most of the week in the San Juans. Mostly running on this outing.

Sat-AM: 1:01, 2600′
Green Mt. up and down front. First snow! 32:55 ascent mixing running and hiking and with traction issues through the final talus switchbacks.  My shin still won’t tolerate running on the steepest grades but does okay on steep downhills.
PM: 1:26, 2600′
Green Mt. up 3rd and down Ranger-Gregory. Was caught by darkness near the summit, so most of the descent was a hike (good for the shin) despite the bright moon.

Sun-AM: 1:13, 2500′
Green Mt. up and down front. Not a lot of motivation this morning because I was worried about my shin, but by sticking to completely hiking (35min ascent) up and down, I definitely didn’t do any damage.

Hours: 9h32 (~4hr of actual running)
Vert: 16,900′

Ugh. I am getting tired of not being able to run comfortably and worry-free.  I have another massage planned for early this week, but I wish I had been able to get in sometime this past week–it really seemed to make a difference.  I also have to be better about not getting over-excited once I’m able to do some pain-free running.  There are still days where I can’t believe I’ve been dealing with this same nuisance (shin tendonitis) for so long.  When it snowed here in Boulder on Saturday morning and I was out on Green I remembered that I was on Green the last time it snowed (in May) and my shin was a concern then too.  Ridiculous.

On another note, being down in the San Juans this week reaffirmed my conviction that Hardrock is the number one priority if the lottery gods shine on me favorably in a couple of month’s time.  The mountains there are simply spectacular.

Lizard Head (ridge of ascent on the left).
The Roost back at the Cross Mt. Trailhead with Sheep Mt. in the clouds.
    I’m ready for the time change to occur — the sun needs to rise earlier.

    Sunshine Mt.
Ophir Needles and Yellow Mt.
First snow.
Saturday morning.

34 responses to “Week Summary: Oct 3 – 9”

  1. Marian says:

    I went through an over 5 months long ordeal with Achilles tendonitis last year. Terribly frustrating and maybe similar to your experience. Tried to ‘run it away’ (a definitely bad approach), took some extended time off and started running on it slowly after it got better. Some days were better, some worse and it just seemed never ending and I was starting to think about silly things like surgery.
    One day I woke up, stood up and it was gone.

  2. Marian says:

    Btw. I do not think a massage is helping with tendonitis. Am no expert but it did seem to make things worse in my case.

  3. DaveT says:

    Amazing photos, as always. I’m following your trials on the road back to fitness as I am recovering from heel spur and achilles tendon surgery. 9 weeks post op, with another 3 or 4 until I’m allowed to run at all, never mind “train”. I have been warned that 1 week too early could mean many weeks setback. Thank goodness for the cycle turbo trainer.
    Dave (UK)

  4. Rob Timko says:

    Despite the shin, looks like a fun week. Great pictures. Green on Saturday was one of the best runs I’ve had since I’ve been out here!

  5. sleeplike says:

    i follow your blog from a long time.
    you are realy a hero,man.

    i’m a ultra runner too, but i’m nothing than you…
    today i run on italian mountains but i can see Boulder and Colorado are realy better.
    i hope i can run and live in Boulder for a part of my life in future. i think can be one of the best place in the world!

    good run Tony and good luck whit the shin.

    Go vegan!

  6. Mike says:

    always inspiring, even with the awful injury-
    i need to find a place to live where i can move through terrain like this, absolutely beautiful. do you carry a camera with you or something?

    i’m up to 75+ miles a week but have no idea what to do about eating! what do you eat when you go for hours on end?

  7. Jim Ellis says:

    love following your blog. love the pictures. inspires me to run even more.

  8. Anton, Marian, et all,

    I have been dealing with Achilles tendonitis in my weak left leg. My right is strong, but a misdiagnosed break in high school has caused many lingering issues in the left leg. I am with Marian. I tried a couple months of running through it and it was a bad idea. I am now over a month off of running. I went for my first hike a few days ago, and it seems to be getting better; however, I know I have a long way to go and it has already been almost four months of being down and out.

    I am learning now to do the hard work, which may mean being agonizingly cautious, thoroughly rehabbing and looking to make any injured area stronger: otherwise, in my experience, it will haunt you!

    Keep up the work, and I feel your pain. I am going crazy not being able to run our trails during my favorite time of the year. The NW is getting soggy in a good way, and the smell of autumn is like a carrot souffle dangling just out of reach for this twitchy hungry turtle.

    But alas, patience!

  9. RunnerJESS says:

    Try ART and/or SASTM on that shin. You’ve probably got a touch of tendinosis, if you’ve truly had the same tendon issue since post-Rocky. If it was tendinitis, it would have cleared up while you were recovering from the broken leg.

  10. Anton
    I was enjoying a little snow atop green as well on Saturday morning, must have missed each other, perfect early fall day, it just felt good to run in brisk cool weather.
    Question I have been meaning to ask you, have you modified your shorts to hold a water bottle in the back or do you just tuck it into the waste band. My empty bottle always gets stuck in my waste band but when full it always slips down my leg. Wondering if you have figured out a way to keep a partially full bottle in your waste band. cheers.

  11. Anton says:

    Austin – The key is having a drawstring in your shorts that has a slight bit of stretch/elasticity to it. Tie it tight. I can’t carry a full UD bottle (20oz) in my waist-band. ~3/4 full on flats/uphills and 1/2 full on downhills.

  12. Brad G. says:

    Lawd those San Juans are gorgeous even in the fog. Thanks for sharing and stay patient. :)

  13. David says:

    Awesome photos, thanks for sharing. Hopefully you’ll be fully recovered by the time 2012 race prep rolls around.

    Also thanks for the barefoot inspiration, I started from scratch about 18 months ago…


    Chicago Dog Runner

  14. Jame says:

    Green was a popular place on Saturday morning. I must have missed all of you out there. (But if you heard somebody singing “Knee Deep” by the Zac Brown Band, with Jimmy Buffett, that would be me)

  15. Melanie says:

    Love your photo of Lizard Head! Very eerie at the top isn’t it? Next time we will all go and climb it too. It was great to meet you with Rory, and I would love some shoe advice for a lovely cobbled staircase run on the Amalfi Coast. Sorry about the Lizard Head car ascent … it was not so easy like running is for you. Melanie with the puffy knee

  16. Guild says:

    I met Scott a couple of days ago at the Brooks Pure Run Booth at Chicago Marathon. I ask him if he enjoyed the hike with you awhile back… And he said you were crazy fast hiker and you dropped him halfway into the hike… Sounded like good times

  17. von says:

    you should join strava.com it’s free.

  18. Spencer says:

    Anton as we move into the winter what gloves do you use for winter running? I usually use a light shell, but as I have got some major winter jaunts planned, around 40 miles on exposed ridgeline, I was wondering what you suggest.

  19. Barry Bliss says:

    Tony, what would you say (if you would say)is the bottom line with these injuries?
    Is it as simple as?:
    1. train too much, get hurt
    2. train too little, don’t realize your full potential
    3. train just right, everything turns out right

  20. Anton says:

    Spencer – This is my favorite glove for most conditions. When it gets really cold, I use the NB Hatchback.

    Barry – Ah, the big question. One I’ve been mulling for most of my 17 years of running, but especially the past nine months.

    I think it IS pretty much exactly as simple as you laid it out, but that is certainly not easy to execute in reality. I’m generally a high volume runner. Over the past five years the peak volume that I hit while healthy has definitely gradually dropped (by design…I’m trying to learn from past mistakes).

    The problem right now is that I’ve had this same exact issue (posterior tibialis/soleus) since mid-January of this year. It was interrupted for three months by a broken leg this summer (freak accident, non-overuse injury), but just hasn’t gotten better for whatever reason(s). But it’s been the same injury this entire time, not a string of injuries.

    The reason it happened in the first place was adding speedwork to my training without a commensurate drop in overall volume. Pretty simple. Getting the tissue back to a place where it will once again tolerate a safe and sane ramping up of running quantity and intensity has been a much, much more complicated process that clearly hasn’t been very effective yet. I’ve explored pretty much every option and am just trying to stay patient.

  21. Ian says:

    Totally oddball question for you: how much coffee do you drink and does it change with training volume?

    Also, sweet pictures. I was down in the San Juans two weeks ago and really enjoyed it.

  22. Anton says:

    Ian – I’ve never developed an affinity for coffee. Love the smell, can barely stand the taste. I guess I get my caffeine via tea, often disgusting amounts of chai. Never noticed how my consumption varies (or not) wrt training volume.

  23. E. Lockwood says:

    What headlamp are you using for night/morning runs in the dark? I’ve got a Petzl Tika plus which works for roads but won’t cut it on the trails, thanks.

  24. Anton says:

    Lockwood – Yeah, the Tikka just isn’t quite enough power. My go-to workhorse headlamp for general training is the Petzl Myo XP. It rides well and provides 85 lumens for many hours.

    However, in my opinion the industry standard for trail racing is the Petzl Myo RXP (the white one), which is 140 lumens. Of course, the trade-off here is that it only lasts for ~4hr or so if you’re constantly blasting at that level. But usually, 85 lumens is enough for me and I reserve the RXP for races.

  25. Eric Jensen says:

    I think if you shave your head and go clean cut on the face, the running Gods will see your commitment and bless you with a faster recovery. It really works if you believe. No scientifical proof here, as none is needed, but the mind is one powerful beast and when we give up a coveted item, we are blessed…. You have to believe. And I mean Shick Quatro on the head as well. Good luck and what fun it is reading your entries. The Humboldt Smoker.

  26. Barry Bliss says:

    Screw that.
    Keep the hair.

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  28. wow gold says:

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  29. Kei E Fujimura1, Keith N Egger1 et Gregory RH Henry2Received 18 Juillet 2007; R茅vis茅 18 Septembre 2007; Accept茅 20 Septembre 2007; Publi茅 en ligne le 25 Octobre 2007.Top de l’effet du r茅chauffement pageAbstractThe exp茅rimentale sur la communaut茅 de saule arctique fongique racine associ茅 (Salix arctica ) a 茅t茅 茅tudi茅e dans trois habitats distincts sur un site de la toundra dans l’Arctique canadien. Les parcelles ont 茅t茅 passivement chauff茅s pendant 5 ans 脿 l’aide de chambres sup茅rieures ouvertes et compar茅es aux parcelles t茅moins 脿 temp茅rature ambiante. Communaut茅s fongiques ont 茅t茅 茅valu茅s 脿 l’aide de terminaux Restriction Fragment Length polymorphismes. Nous avons constat茅 ce qui suit: (1) la communaut茅 de racine associ茅 fongique dans ces habitats de la toundra arctique 茅lev茅s est tr猫s diversifi茅e; (2) les caract茅ristiques du site et des sols sont les facteurs les plus importants de la structure des communaut茅s et (3) le r茅chauffement a augment茅 la densit茅 de diff茅rents g茅notypes sur sections de racines individuelles, mais n’a pas (encore) modifi茅 la composition, la richesse ou la r茅gularit茅 de la communaut茅. La variation de la densit茅 de g茅notype dans les parcelles chaudes a 茅t茅 associ茅e 脿 une augmentation de la PCR efficacit茅 de l’amplification, ce qui sugg猫re que l’augmentation de l’allocation C souterraine augmente la biomasse totale des community.Studies fongiques des impacts du r茅chauffement exp茅rimental sur la toundra arctique ont montr茅 que les plantes r茅agissent fortement et rapidement au r茅chauffement exp茅rimental, avec des changements dans la ph茅nologie des plantes, l’effort de reproduction et de la productivit茅 (Henry et Molau, 1997; Arft et al, 1999;. Henry, 2002;. Walker et al, 2006), et l’augmentation de l’allocation de carbone aux racines ( Hill, 2006). Au niveau de la communaut茅 v茅g茅tale, le r茅chauffement caus茅 hauteur accrue et la couverture d’arbustes et de gramin茅es 脿 feuilles caduques, diminution de la couverture de mousse et de lichen de la diversit茅, et une diminution des esp猫ces et la r茅gularit茅 (Hollister et al, 2005 (Cornelissen et al, 2001.);. Walker et al ., 2006), bien que l’ampleur de ces changements d茅pend du type d’茅cosyst猫me (Van Wijk et al., 2004) et la latitude (Walker et al., 2006). Les r茅sultats exp茅rimentaux soutiennent les conclusions qui ont augment茅 arbuste abondance (Sturm et al., 2001) et la toundra verdeur (Richter Menge et al., 2006) dans les r茅gions arctiques sont le r茅sultat de la r茅cente warming.There ont eu peu d’茅tudes qui examinent comment le r茅chauffement affecte racine associ茅 communaut茅s microbiennes, m锚me si les principaux effets du r茅chauffement de la plan猫te peuvent d茅couler des influences de l’augmentation de la temp茅rature du sol et la concentration de CO2 sur les processus du sol (Pendall et al., 2004). Augmentation de la temp茅rature du sol peut influencer la croissance des racines, la ph茅nologie et de l’architecture, de la respiration et l’absorption d’ions, l’eau et la disponibilit茅 des nutriments (Pregitzer et al., 2000), mais les impacts sur les communaut茅s microbiennes du sol est vari茅e et souvent impr茅visible (Zak et al., 2000) . R茅ponses des champignons mycorhiziens 脿 des facteurs de changement global simul茅es (CO2, r茅chauffement, ombrage et de fertilisation) sont 茅galement variables, bien que plusieurs 茅tudes ont trouv茅 un lien pas inattendu entre l’augmentation de l’allocation usine de C souterraine et l’augmentation de la colonisation mycorhizienne (Staddon et al, 2002;. Urcelay et al, 2003;.. Fitter et al, 2004; Heinemeyer et Fitter, 2004;. Olsrud et al, 2004; Clemmensen et al, 2006).. Certaines 茅tudes ont montr茅 que les traitements exp茅rimentaux modifient la composition de la communaut茅 mycorhizienne (Rygiewicz et al, 2000;. Clemmensen et Michelsen, 2006;. Parrent et al, 2006), mais ces changements sont rarement d’une ampleur suffisante pour modifier de mani猫re significative la richesse globale ou la diversit茅 des la community.Given le r么le important de la racine champignons associ茅s 脿 l’absorption de nutriments, nous a entrepris d’examiner les interactions entre le site et les caract茅ristiques du sol et du r茅chauffement exp茅rimental sur la composition et la diversit茅 de la communaut茅 de l’arbuste nain ectomycorhizienne, Salix arctica fongique racine associ茅. Depuis racines ont 茅t茅 lav茅es bien avant la caract茅risation, la communaut茅 fongique associ茅e racine doit 锚tre domin茅e par des champignons mycorhiziens, endophytes cloisonn茅es sombres, endophytes hyalin cloisonn茅es, et peut-锚tre les pathog猫nes racinaires. Champignons mycorhiziens ectomycorhiziens et 茅rico茂des sont des composants importants des syst猫mes arctiques (gardes et Dahlberg, 1996), et endophytes cloisonn茅es sombre et endophytes hyalin cloisonn茅es sont omnipr茅sents dans les deux syst猫mes alpines et arctiques (Bledsoe et al, 1990;. Gardes et Dahlberg, 1996; Jumpponen , 1999;. C et al, 2005). Bien que les contributions des mycorhizes 脿 l’absorption des nutriments sont bien connus (Smith et Read, 1997), la fonction de endophytes cloisonn茅es sombres et endophytes hyalin cloisonn茅es sont moins claires, car elles semblent aller de pathog猫ne 脿 mutualiste (Jumpponen, 2001). Endophytes cloisonn茅es sombres ont 茅t茅 茅mis l’hypoth猫se d’imiter le r么le des champignons mycorhiziens 脿 arbuscules, qui sont rares dans l’Extr锚me-Arctique (Bledsoe et al., 1990). Pour 茅tudier l’impact potentiel du changement climatique sur les communaut茅s fongiques associ茅es profondes, exp茅riences de r茅chauffement ont 茅t茅 茅tablis dans trois sites: un site de plaine sur des mat茅riaux d’origine essentiellement granitiques, un site de montagne sur des mat茅riaux parentaux granitiques et un site de montagne sur des mat茅riaux parentaux dolomitiques. Le climat de plus en plus de la saison sur le site de plaine est relativement chaude en raison de ciel souvent clair, les masses d’air relativement chaudes de l’ouest et du sud (Labine, 1994), et la r茅flexion de la lumi猫re du soleil des glaciers et de la glace de mer dans la plaine (Freedman et al. , 1994). Les sols sont principalement cryosols r茅gosoliques (Muc et al., 1994a) sont constitu茅s de mati猫res m猫res granitiques (Sterenberg et Pierre, 1994). Le site de plaine a 茅t茅 class茅 comme une communaut茅 v茅g茅tale d’arbustes nains et est domin茅 par Cassiope t茅tragone, integrifolia Dryas et S. arctica, avec Vaccinium uliginosum, Saxifraga oppositifolia et Luzula nivalis (Muc et al., 1994b). Les sites de montagne sont situ茅s sur le dessus du plateau occidental 脿 500 Ces sites 茅taient xeric avec une v茅g茅tation clairsem茅e et pr茅sentent d茅sert polaire et conditions semi d茅sertiques. La diversit茅 des plantes vasculaires 茅tait d’environ 40 inf茅rieur au site de plaine (Batten et Svoboda, 1994). Les deux sites de montagne se distinguent par le type de sol: les hautes terres granitiques (UG) Site survenu sur les mat茅riaux granitiques m猫res similaires sur le site de plaine, et les hautes terres dolomitique (UD) site d茅velopp茅 脿 partir de mat茅riaux d’origine dolomitique, qui ont 茅t茅 caract茅ris茅es par des concentrations 茅lev茅es de calcium le carbonate de magn茅sium (CaMg (CO3) 2), un pH 茅lev茅 et 脿 faible d茅p么t de mati猫re organique. Le site UG a 茅t茅 domin茅e par S. arctica et S. oppositifolia, avec C. et D. integrifolia tetragona composants mineurs. Le site UD a 茅t茅 domin茅e par D. integrifolia, S. arctica et S. oppositifolia;. C. tetragona 茅tait absent 脿 ce site (Batten et Svoboda, 1994) Experimental warmingTo augmenter exp茅rimentalement la temp茅rature, chambres ouvertes meilleurs (OTC), qui couvraient 0,8 et ont 茅t茅 de 0,3 de haut, ont 茅t茅 utilis茅s pour passivement parcelles chaudes 脿 chacun des sites. OTC ont 茅t茅 install茅s sur le site de LG en 1995 et sur les deux sites de montagne en 1993 (Stenstr et al., 1997). Sp茅cimens Champ collectionTwo de S. arctica ont 茅t茅 r茅colt茅es 脿 partir de chacun des trois parcelles de gr茅 脿 gr茅 sur chaque site en Ao没t 2000. Deux plantes qui ont 茅t茅 trouv茅es entre 0,5 et 1,5 de l’OTC ont 茅t茅 r茅colt茅es en tant que t茅moins ambiantes. Les plantes et les sols environnants ont 茅t茅 conserv茅s dans des sacs Ziploc (18 20 dans un refroidisseur de perg茅lisol 脿 approx.For analyse du sol, deux 300 茅chantillons de sol ont 茅t茅 recueillis en Ao没t 2001 dans une des usines de ambiantes r茅colt茅s. Sols ont 茅t茅 s茅ch茅s et tamis茅s (2 脿 enlever roches et des d茅bris de cours du samples.Sampling de racines rootsPlant ont 茅t茅 conserv茅s au froid pendant le transport et conserv茅s 脿 4 avant l’茅chantillonnage. racines ont 茅t茅 immerg茅s dans l’eau jusqu’脿 24 脿 4 avant le lavage pour desserrer les mat茅riaux adh茅rents. Les syst猫mes racinaires ont ensuite 茅t茅 vigoureusement lav茅e avec de l’eau du robinet et recueilli dans un tamis de 0,5. racines ont 茅t茅 coup茅es en deux sections, puis immerg茅s dans l’eau distill茅e st茅rile sur une grille num茅rot茅e. L’segment de racine qui a travers茅 ou 茅tait proche d’un point de grille choisi au hasard a 茅t茅 choisi. Trente segments de racines ont 茅t茅 s茅lectionn茅 au hasard dans chaque usine. tissus foliaires a 茅galement 茅t茅 茅chantillonn茅 脿 confirmer que l’ADN de la plante ne serait pas amplifier l’extraction primers.DNA choisi et sa restriction de longueur des fragments borne polymorphisme analysisDNA a 茅t茅 extrait 脿 partir de l’extr茅mit茅 des racines en utilisant un protocole CTAB (Gardes et Bruns, 1996) qui a 茅t茅 modifi茅e en excluant le cycle de cong茅lation et en incluant un alcool ph茅nolique suppl茅mentaire (1:1) de l’茅tape de purification (Lee et Taylor, 1990). Le culot a 茅t茅 re en suspension dans 50 de TE 8 tampon. Les tissus v茅g茅taux ont 茅t茅 extraits avec le m锚me protocole, sauf le ph茅nol alcool 茅tape de purification suppl茅mentaire n’est pas inclus, et les pastilles ont 茅t茅 re en suspension dans 100 TE 8. L’amorce sens ITS1 a 茅t茅 marqu茅 avec Cy5 colorant et le ITS4 amorce inverse a 茅t茅 marqu茅 avec Cy5.5 colorant pour permettre la d茅tection d’un fragment analyseur OpenGene (Bayer Healthcare, Tarrytown, NY, USA). Les 茅chantillons qui ne amplifient avec succ猫s 脿 une dilution de 1:10 ont 茅t茅 refaits en utilisant 1 d’extrait d’ADN non dilu茅. Le programme suivant a 茅t茅 utilis茅 pour la PCR sur un thermocycleur PTC 100 (MJ Research): 94 (4 48 (1 72 (2 (94 (30 (48 30 72 30 34 (1 cycles); 72 (6 30 茅chantillons ont 茅t茅 analys茅s sur un 0,7 gel d’agarose pour confirmer amplification.Digestions utilisant Alul ou Hinfl (Invitrogen) et 6 du produit de PCR ont 茅t茅 effectu茅es dans 10 r茅actions suivant les recommandations du fabricant et incuber 脿 37 pendant au moins 3 Un microlitre des 茅chantillons dig茅r茅s a 茅t茅 m茅lang茅 avec 1,65 de chargement M茅lange de colorants qui formamide et deux ensembles de marqueurs internes contenait 脿 101, 200 et 351, un ensemble marqu茅 avec Cy 5.0, l’autre avec Cy 5.5. Les 茅chantillons contenant le m茅lange de chargement de colorant ont 茅t茅 d茅natur茅s 脿 80 掳 C pendant 2 puis d茅sactiv茅 sur de la glace. Deux microlitres ont ensuite 茅t茅 charg茅s sur un gel 脿 6 polyacrylamide avec la puissance du laser fix茅 脿 50 temp茅rature 脿 53 et le courant de 1250 et une dur茅e de 60 sur une longue Tour de syst猫me OpenGene Sequencer (Bayer International). fragments terminaux qui ont d茅pass茅 une valeur de seuil en fonction de la taille de les pics de marqueurs ont 茅t茅 d茅termin茅es 脿 l’aide GeneObjects logiciel 3.1 de l’analyse de fragments (Bayer Healthcare, Tarrytown, NY, USA) pour chaque combinaison d’amorces (c’est-脿-ITS1 Alul, ITS1 Hinfi, ITS4 Alul et ITS4 Hinfi). analysisPeaks donn茅es ont 茅t茅 mis en cellule pour identifier les g茅notypes, puis la fr茅quence de g茅notype a 茅t茅 totalis茅es pour chaque combinaison d’enzymes. densit茅 du g茅notype par extr茅mit茅 de la racine, la richesse et la r茅gularit茅 ont 茅t茅 calcul茅es s茅par茅ment pour chacune des quatre combinaisons d’enzymes ensuite la moyenne pour fournir une estimation de chaque param猫tre. tableaux de fr茅quence du g茅notype de chacun des quatre combinaisons d’enzymes ont 茅t茅 combin茅s pour une utilisation dans PERMANOVA, la coordination et 脿 deux voies densit茅 cluster analyses.Genotype a 茅t茅 normalis茅 en divisant par le nombre total d’茅mergence des racines de l’茅chantillon par parcelle, car le nombre de bouts de racine de chaque sp茅cimen de plante vari茅e. Normalisation suppos茅 que les g茅notypes sont absents 脿 partir des 茅chantillons qui n’ont pas 茅t茅 re莽us apr猫s au moins deux amplifications par PCR distinctes 脿 diff茅rentes dilutions. Une analyse 脿 deux voies de la variance (Anova) a 茅t茅 ex茅cut茅 脿 l’aide Statistica, v. 6.1 (StatSoft, Tulsa, OK, USA) pour 茅tudier les effets de site et de traitement sur la densit茅 de g茅notype. Pour d茅terminer si la densit茅 est corr茅l茅e avec la biomasse accrue, deux ANOVA a 茅t茅 ex茅cut茅 脿 l’aide d’une mesure de l’efficacit茅 d’amplification (nombre de bouts de racine amplifi茅s de bouts de racine tent茅). G茅notype richesse a 茅t茅 mesur茅e par le nombre de g茅notypes uniques par parcelle. La probabilit茅 de Hurlbert de intersp茅cifique indice de rencontre, telle que transpos茅e dans Ecosim 7.72 (Gotelli et Entsminger, 2006), a 茅t茅 utilis茅 pour 茅valuer l’homog茅n茅it茅. Parce que la densit茅 de g茅notype variait consid茅rablement entre les sites et les traitements, le g茅notype richesse et la r茅gularit茅 ont 茅t茅 normalis茅s selon individuel bas茅 rar茅faction mis en 艙uvre dans le programme de Ecosim v 7.72 (Gotelli et Entsminger, 2006). Rar茅faction que les diff茅rences de richesse de g茅notype ou la r茅gularit茅 ne sont pas les d茅fauts caus茅s par des diff茅rences d’intensit茅 d’茅chantillonnage. Deux ANOVA a 茅t茅 r茅alis茅e 脿 la fois la richesse et evenness.Nonmetric multidimensionnelle utilisant PC ORD, la version 5.03 (McCune et Mefford, 1999) a 茅t茅 utilis茅e pour examiner la r茅partition des parcelles dans l’espace de g茅notype. Canonical Correspondence Analysis (CCA) (McCune et Mefford, 1999) a 茅t茅 utilis茅 pour examiner si les propri茅t茅s du sol (c’est-脿-pH, CEC, disponible NH4, disponible NO3, disponible rapport P, C et des cations 茅changeables) diff茅rences dans la fr茅quence du g茅notype et la composition expliqu茅 entre les sites. Les propri茅t茅s du sol ont 茅t茅 transform茅es par log10 sauf pour le pH et le taux de C. Un test de Monte Carlo est utilis茅e pour tester une relation lin茅aire entre la fr茅quence du g茅notype et les propri茅t茅s du sol. P et N disponible), concentration (des cations 茅changeables et CEC), ou le rapport (C pH), ce qui pourrait expliquer en partie la variation due au site ou de traitement. La mise en 艙uvre de PERMANOVA dans PC ORD, la version 5.03 (McCune et Mefford, 1999) en utilisant l’indice de Sorensen relative a 茅t茅 utilis茅 pour d茅terminer si le site ou le traitement (r茅chauffement) 茅tait un facteur statistiquement significatif pour expliquer les diff茅rences dans la fr茅quence du g茅notype et de la composition. L’indice Sorensen relative normalise les donn茅es par unit茅s d’茅chantillonnage, d茅pla莽ant ainsi l’accent de la fr茅quence absolue des g茅notypes 脿 des proportions relatives au sein des unit茅s de l’茅chantillon (McCune et Mefford, 1999). G茅notype diversit茅 a 茅galement 茅t茅 茅tudi茅e en examinant les courbes g茅notype rang d’abondance, qui ont 茅t茅 g茅n茅r茅s par prenant le logarithme naturel de l’abondance de g茅notype (mesur茅e en nombre d’occurrences d’un g茅notype par rapport au nombre total de g茅notypes individuels observ茅s) et de complot contre le rang g茅notype de l’abondance. Analyses niche de r茅partition ont 茅t茅 effectu茅es 脿 l’aide PowerNiche (Drozd et Novotny, 1999), une macro bas茅 sur Excel qui permet de d茅terminer si les courbes rang de l’abondance des mod猫les de niche r茅partition ajustement bas茅 sur les travaux de Tokeshi, Sugihara, et MacArthur (voir Magurran, 2004). La s茅lection et la division des exposants ont 茅t茅 modifi茅es pour chaque test du mod猫le de puissance avec 250 r茅plications. Diff茅rents mod猫les ont 茅t茅 test茅s en modifiant la s茅lection (et division exposant (qui est indicative de quel mod猫le cr茅neau de r茅partition est choisie Les mod猫les suivants ont 茅t茅 test茅s:. Mod猫le de b芒ton cass茅 (km le mod猫le de fraction al茅atoire (km le mod猫le de fraction de puissance (0 m et s茅quentiel bris mod猫le de Sugihara (de km (Drozd et Novotny, 1999). Haut de pageResultsOur mod猫le exp茅rimental utilis茅 trois sites avec trois r茅p茅titions plac茅es au hasard de gr茅 脿 gr茅 et les traitements de contr么le ambiant au sein de chaque site. Pour apaiser les inqui茅tudes que l’extr茅mit茅 des racines de plantes individuelles se r茅plique n’茅taient pas ind茅pendants estimations de la densit茅 de g茅notype ou la richesse (c’est-脿-bouts de racine de la m锚me plante 茅taient plus proches), nous avons couru pr茅liminaire de deux fa莽on, imbriqu茅s ANOVA avec sp茅cimen de plante imbriqu茅s dans les r茅p茅titions de traitement (des parcelles ou le contr么le chaudes). Ces analyses pr茅liminaires ont confirm茅 que r茅plique de l’usine n’茅tait pas un facteur significatif (P Nous concluons que les 茅chantillons d’une seule usine de pointe de la racine ne sont pas plus semblables que l’茅chantillon group茅 de deux usines, ce qui est coh茅rent avec un mod猫le de colonisation o霉 la plupart colonisation des racines de rin莽age se fait par le sol d’origine inoculum plut么t que de l’inoculum existante sur les racines. Sur cette base, nous avons senti justifi茅 dans l’茅limination de sp茅cimen de plante r茅plique pour les analyses finales, et donc nous n’avons pas violer l’hypoth猫se d’ind茅pendance parce que les deux variables ind茅pendantes, le site et le traitement, ont 茅t茅 utilis茅s dans notre principal effet finale ANOVA model.The de 5 ans de r茅chauffement 茅tait d’augmenter la densit茅 de g茅notype (nombre de diff茅rents g茅notypes par extr茅mit茅 de la racine) sur les racines.

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